
本試劑盒提供了簡單又快速的免染12.5%SDS-PAGE 彩色(紅色)凝膠配制試劑,采用上層膠(也稱濃縮膠、積層膠)和下層膠(也稱分離膠)的預混配方, 只需加入改良型促凝劑即可快速制備凝膠, 避免的傳統制膠法中TEMED 的惡臭味,保護了實驗人員的身體健康,可在短時間內制備多塊凝膠,無需計算所需溶液量,無需稀釋,操作簡便。且使用本產品所配置的上層膠帶有顏色(紅色),使得蛋白點樣孔清晰呈現,實現了加樣過程的可視化,極大的提高了加樣效率,有利于點樣和控制電泳進程。本產品上層膠中的(紅色)染料可在上層膠中穩定存在,不會隨著電泳而遷移至下層膠,不會影響電泳和蛋白染色效果, 電泳完成后也便于識別上層膠并切除。本產品所制備的凝膠為免染PAGE膠,蛋白條帶紫外曝光即可成像,無需染膠,也不影響后續Western Blot等實驗。
本產品的改良型促凝劑具有更好的穩定性和催化效能,配制過程中無需額外添加 TEMED。為確保實驗效果和方便吸取使用, 已開蓋使用過的改良型促凝劑可置于 4°C 保存至少 3 個月。
本試劑盒可制備厚度 0.75mm 常規尺寸的凝膠50 塊,具體配制的凝膠塊數量與凝膠的厚薄以及凝膠大小有關。

產品編號 | 名稱 | 包裝及規格 |
PMK1015C-1 | 上層膠溶液 | 30ml x 1 |
PMK1015C-2 | 彩色上層膠緩沖液(紅色) | 30ml x 1 |
PMK1015C-3 | 下層膠溶液 | 100ml x 1 |
PMK1015C-4 | 下層膠緩沖液 | 100ml x 1 |
PMK1015C-5 | 改良型促凝劑 | 1ml x 4 |

(以一塊 0.75/1.0/1.5mm 的 mini 膠為例)
1. 取等體積下層膠溶液和下層膠緩沖液沖液,各2.0/2.7/4.0mL,輕輕混勻。
2. 向步驟 1 的混合溶液中加入40/60/80μl的改良型促凝劑,輕輕混勻。
3. 將步驟 2 的混合溶液注入制膠玻璃板中,使液面和短玻璃板上沿之間的距離比梳齒長0.5cm即可,加入適量水或醇(如乙醇、異丙醇等)覆蓋于下層膠之上。(此溶液為過量,請勿全部注入,可留少許以判斷凝膠狀態)
4. 待下層膠凝固后(約15min),倒去上層水或醇。(當水或醇和膠之間有一條折射線時,說明膠已凝固)
5. 取等體積上層膠溶液和彩色上層膠緩沖液,各0.5/0.75/1.0mL,輕輕混勻。(由于染料的特殊理化性質,使用前請搖勻)
6. 向步驟 5 的混合溶液中加入10/15/20μl的改良型促凝劑,輕輕混勻。
7. 將步驟 6 的混合溶液注入制膠玻璃板中,插入梳齒。
8. 待上層膠凝固后(約15min),拔去梳齒即可用于電泳。
9. 電泳結束后,即可將凝膠從玻璃板中取出,放入成像儀紫外(波長 302nm)曝光成像,或在紫外切膠臺上直接觀察。 (注意:紫外激發熒光基團一般需1-5min,凝膠上即可呈現清晰的蛋白條帶。觀察Western Blot轉印后膜上蛋白條帶,必須在電泳后,將凝膠經紫外激發出現清晰條帶后,再進行轉膜操作。若直接轉膜再用紫外激發,熒光信號會很弱或無信號。)

1. 請盡量使用新鮮配制的電泳緩沖液。
2. 本產品制備出的上層膠和下層膠與傳統的濃縮膠和分離膠配方一致,針對10-60kDa的蛋白都能有很好的濃縮和分離效果,如果針對更大分子量的蛋白,建議選用普美克的10%免染SDS-PAGE彩色凝膠快速配制試劑盒(PMK1014C)效果更好;針對更小分子量的蛋白,建議選用普美克的15%免染SDS-PAGE彩色凝膠快速配制試劑盒(PMK1017C)效果更好。
3. 改良型促凝劑的使用量僅作參考,實際用量可根據個人實驗習慣和經驗調整,加入較多量的促凝劑可加速凝膠,反之亦然。
4. 凝膠速度與溫度有顯著的正相關性。同等條件下,溫度越高,凝膠速度越快,室溫過高時建議適當減小改良型促凝劑的用量,室溫較低時,可適當延長凝膠時間。
5. 本產品已加入適量 TEMED的替代品,如需進一步加速凝膠,臨配膠前可按需補充適量 TEMED。
6. 在配膠之前,使膠溶液及緩沖液平衡到室溫(如室溫放置幾分鐘),可有效避免凝膠中氣泡的形成。
7. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
8. 本產品僅限于專業人員的科學研究使用,不得用于臨床診斷或治療,不得用于食品或藥品,不得存放于普通住宅內。
1. Zhiguo Gao,Yaojia Li,* and Baiwang Sun, Chemocatalytic Cell Tagging Platform for Recording Cell-Cell Interactions via Engineered Palladium-Based Artificial Metalloenzymes. (IF 16.6)
答:如果能夠排除下面的幾個問題,那么問題多半出現在一抗和抗原制備上。
1、二抗的HRP 活性太強,將底物消耗光;
2、ECL底物中H2O2不穩定,失活;
3、ECL底物沒覆蓋到相應位置;
4、一抗選擇不當;
5、二抗失活。
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